References

antibiotics

Антибиотики и Химиотерапия

Antibiot Khimioter = Antibiotics and Chemotherapy

0235-2990

ООО «Издательство ОКИ»

10.37489/0235-2990-2022-67-9-10-18-24

antibiotics-964

Research Article

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

Experimental Research

Сравнительная активность липогликопептидных антибиотиков в отношении грамположительных бактерий

Comparative Activity of Lipoglycopeptide Antibiotics Against Gram-Positive Bacteria

https://orcid.org/0000-0002-3480-8089

Гостев

В. В.

Gostev

V. V.

Гостев Владимир Валерьевич — к. б. н.

WOS Researcher. ID: P-1949-2016

Scopus Author ID: 55614534400

ул Профессора Попова, д. 9, г. Санкт-Петербург, 197022

Vladimir V. Gostev — Ph.D. in Biology

WOS Researcher. ID: P-1949-2016

Scopus Author ID: 55614534400

9 Professora Popova st., St. Petersburg, 197022

guestvv11@gmail.com

https://orcid.org/0000-0003-3493-0583

Сулян

О. С.

Sulian

O. S.

Сулян Офелия Спартаковна

WOS Researcher ID: AAB-3314-2021

Scopus Author ID: 57219423522

Санкт-Петербург

Ofeliia S. Sulian

WOS Researcher ID: AAB-3314-2021

Scopus Author ID: 57219423522

Saint Petersburg

https://orcid.org/0000-0003-1419-9068

Калиногорская

О. С.

Kalinogorskaya

O. S.

Калиногорская Ольга Серафимовна — к. м. н.

WOS Researcher ID: AAW-3832-2020

Scopus Author ID: 56525317800

Санкт-Петербург

Olga S. Kalinogorskaya — Ph.D. in Medicine

WOS Researcher ID: AAW-3832-2020

Scopus Author ID: 56525317800

Saint Petersburg

Попенко

Л. Н.

Popenko

L. N.

Попенко Любовь Николаевна — заведующая микробиологической лабораторией

Scopus Author ID: 55949337200

Санкт-Петербург

Lyubov N. Popenko — Head of the Microbiological Laboratory

Scopus Author ID: 55949337200

Saint Petersburg

https://orcid.org/0000-0001-6849-0008

Круглов

А. Н.

Kruglov

A. N.

Круглов Александр Николаевич — к. б. н., заведующий лабораторией клинической микробиологии, врач-бактериолог

Москва

Alexander N. Kruglov — Ph. D. in Biology, Head of the Laboratory of Clinical Microbiology, bacteriologist

Scopus Author ID: 23489202100

Moscow

Гордеева

С. А.

Gordeeva

S. A.

Гордеева Светлана Александровна — заведующая лабораторией, централизованная бактериологическая лаборатория

Scopus Author ID: 57201845051

Санкт-Петербург

Svetlana A. Gordeeva — Head of the Centralized Bacteriological Laboratory

Scopus Author ID: 57201845051

Saint Petersburg

Нестерова

Е. В.

Nesterova

E. V.

Нестерова Елена Викторовна — врач-бактериолог, клинико-диагностическая лаборатория

Санкт-Петербург

Elena V. Nesterova — bacteriologist at the Clinical Diagnostic Laboratory

Saint Petersburg

https://orcid.org/0000-0003-4957-7110

Гладин

Д. П.

Gladin

D. P.

Гладин Дмитрий Павлович — к. м. н., доцент, и. о. заведующего кафедрой микробиологии, вирусологии и иммунологии

Scopus Author ID: 6603374770

Санкт-Петербург

Dmitrii P. Gladin — Ph. D. in Medicine, Associate Professor, Acting Head of the Department of Microbiology, Virology and Immunology

Scopus Author ID: 6603374770

Saint Petersburg

Трофимова

Н. Н.

Trophimova

N. N.

Трофимова Наталья Николаевна — врач-бактериолог, клинико-диагностическая лаборатория

Санкт-Петербург

Natalya N. Trofimova — bacteriologist at the Clinical Diagnostic Laboratory

Saint Petersburg

https://orcid.org/0000-0002-6279-944X

Чулкова

П. С.

Chulkova

P. S.

Чулкова Полина Сергеевна

WOS Researcher ID: AAB-3307-2021

Scopus Author ID: 57210585992

Санкт-Петербург

Polina S. Chulkova

WOS Researcher ID: AAB-3307-2021

Scopus Author ID: 57210585992

Saint Petersburg

https://orcid.org/0000-0002-3549-3525

Агеевец

И. В.

Ageevets

I. V.

Агеевец Ирина Владимировна — к. м. н.

WOS Researcher ID: F-8698-2017

Scopus Author ID: 57189621346

Санкт-Петербург

Irina V. Ageevets — Ph. D. in Medicine

WOS Researcher ID: F-8698-2017

Scopus Author ID: 57189621346

Saint Petersburg

https://orcid.org/0000-0002-3963-0144

Агеевец

В. А.

Ageevets

V. A.

Агеевец Владимир Андреевич — к. б. н.

WOS Researcher ID: F-9282-2017

Scopus Author ID: 55949608900

Санкт-Петербург

Vladimir A. Ageevets — Ph. D. in Biology

WOS Researcher ID: F-9282-2017

Scopus Author ID: 55949608900

Saint Petersburg

Черненькая

Т. В.

Chernenkaya

T. V.

Черненькая Татьяна Витальевна — к. м. н., заведующая научной лабораторией клинической микробиологии

Scopus Author ID: 7801648630

Москва

Tatyana V. Chernenkaya — Ph. D. in Medicine, Head of the Scientific Laboratory of Clinical Microbiology

Scopus Author ID: 7801648630

Moscow

ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней ФМБА России»; ФГБОУ ВО Северо-Западный государственный медицинский университет им. И. И. Мечникова Минздрава РоссииРоссияPediatric Research and Clinical Center for Infectious Diseases; North-Western State Medical University Named after I. I. MechnikovRussian Federation

ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней ФМБА России»РоссияPediatric Research and Clinical Center for Infectious DiseasesRussian Federation

ГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт скорой помощи им. И. И. Джанелидзе»РоссияSt. Petersburg I. I. Dzhanelidze Research Institute of Emergency MedicineRussian Federation

ГБУ Московский многопрофильный клинический центр «Коммунарка» ДЗМРоссияMoscow Multidisciplinary Clinical Center «Kommunarka»Russian Federation

СПб ГБУЗ «Клиническая инфекционная больница им. С. П. Боткина»РоссияClinical Infectious Diseases Hospital named after S.P. BotkinRussian Federation

СПб ГБУЗ «Городской кожно-венерологический диспансер»РоссияCity Skin and Venereal Diseases DispensaryRussian Federation

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава РоссииРоссияSt. Petersburg State Pediatric Medical University of the Ministry of Health of the Russian FederationRussian Federation

ГБУЗ «НИИ скорой помощи им. Н. В. Склифосовского ДЗМ»РоссияN.V. Sklifosovsky Research Institute for Emergency MedicineRussian Federation

2022

28122022

679-101824

Copyright © Гостев В.В., Сулян О.С., Калиногорская О.С., Попенко Л.Н., Круглов А.Н., Гордеева С.А., Нестерова Е.В., Гладин Д.П., Трофимова Н.Н., Чулкова П.С., Агеевец И.В., Агеевец В.А., Черненькая Т.В., 2022

2022

Гостев В.В., Сулян О.С., Калиногорская О.С., Попенко Л.Н., Круглов А.Н., Гордеева С.А., Нестерова Е.В., Гладин Д.П., Трофимова Н.Н., Чулкова П.С., Агеевец И.В., Агеевец В.А., Черненькая Т.В.

Gostev V.V., Sulian O.S., Kalinogorskaya O.S., Popenko L.N., Kruglov A.N., Gordeeva S.A., Nesterova E.V., Gladin D.P., Trophimova N.N., Chulkova P.S., Ageevets I.V., Ageevets V.A., Chernenkaya T.V.

Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://www.antibiotics-chemotherapy.ru/jour/article/view/964

Липогликопептидные антибиотики являются полусинтетическими производными гликопептидов и характеризуются выраженной бактерицидной активностью в отношении грамположительных патогенов. Цель исследования — сравнительная оценка чувствительности грамположительных клинических изолятов к липогликопептидным антибиотикам (телаванцину, далбаванцину, оритаванцину). В работу были включены следующие изоляты: метициллинорезистентные Staphylococcus aureus (MRSA, n=780), метициллинорезистентные коагулазоотрицательные Staphylococcus spp. (MRCoNS, n=163), и ванкомицинорезистентные Enterococcus faecium (VREf, n=93). Для оценки чувствительности использовали серийные разведения с добавлением в среду 0,002% полисорбата 80. Липогликопептиды проявляли более выраженную антибактериальную активность в отношении MRSA, по сравнению с ванкомицином, тейкопланином и даптомицином, и имели МПК₅₀/МПК₉₀ (мкг/мл): для телаванцина — 0,06/0,125, далбаванцина — 0,016/0,06, и оритаванцина — 0,06/0,125. Была установлена тенденция к увеличению МПК липогликопептидов и даптомицина у MRSA c МПК ванкомицина 2 мкг/мл, доля которых составила 13%. Для MRCoNS МПК₅₀ и МПК₉₀ липогликопептидов не превышали 0,06 мкг/мл и 0,125 мкг/мл, соответственно. Оритаванцин проявлял выраженную активность в отношении VREf с диапазоном МПК от 0,03 мкг/мл до 0,5 мкг/мл при МПК₉₀ 0,25 мкг/мл. Таким образом, липогликопептидные антибиотики являются альтернативой ванкомицину и даптомицину, характеризуются выраженной активностью и могут использоваться длялечения тяжёлых форм стафилококковых инфекций.

Lipoglycopeptide antibiotics are semi-synthetic derivatives of glycopeptides and are characterized by a pronounced bactericidal activity against gram-positive pathogens. The aim of the study was comparative assessment of the sensitivity of gram-positive clinical isolates to lipoglycopeptide antibiotics (telavancin, dalbavancin, oritavancin). The following isolates were included in the work: methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA, n=780), methicillin-resistant coagulase-negative Staphylococcus spp. (MRCoNS, n=163), and vancomycin-resistant Enterococcus faecium (VREf, n=93). Serial dilutions were used to assess sensitivity with the addition of 0.002% polysorbate 80 to the medium. Lipoglycopeptides showed more pronounced antibacterial activity against MRSA compared to vancomycin, teicoplanin, and daptomycin, and had a MIC₅₀/MIC₉₀ (µg/ml): for telavancin — 0.06 /0.125, for dalbavancin — 0.016/0.06, and for oritavancin — 0.06/0.125. A trend towards an increase in the MIC of lipoglycopeptides and daptomycin was established in MRSA with the MIC of 2 µg/ml for vancomycin, the proportion of which was 13%. For MRCoNS, MIC₅₀ and MIC₉₀ of lipoglycopeptides did not exceed 0.06 µg/ml and 0.125 µg/ml, respectively. Oritavancin showed strong activity against VREf at MIC range of 0.03 µg/ml to 0.5 µg/ml, and at MIC₉₀ of 0.25 µg/ml. Thus, lipoglycopeptide antibiotics are a plausible alternative to vancomycin and daptomycin; they are characterized by pronounced activity and can be used to treat severe forms of staphylococcal infections.

Staphylococcus aureusMRSAстафилококкиэнтерококкичувствительностьванкомицинтелаванциноритаванциндалбаванцинтейкопланиндаптомицин

Staphylococcus aureusMRSAstaphylococcienterococcisensitivityvancomycintelavancinoritavancindalbavancinteicoplanindaptomycin

Исследование поддержано грантом Российского Научного Фонда 18-75-10114-П.

References1

Blaskovich M. A. T., Hansford K. A., Butler M. S. et al. Developments in glycopeptide antibiotics. ACS Infect Dis. 2018; 4 (5): 715–735. doi: 10.1021/acsinfecdis.7b00258.

Smith J. R., Roberts K. D., Rybak M. J. Dalbavancin: A novel lipoglycopeptide antibiotic with extended activity against gram-positive infections. Infect Dis Ther. 2015; 4 (3): 245–258. doi: 10.1007/s40121-015-0077-7.

Karlowsky J. A., Nichol K., Zhanel G. G. Telavancin: mechanisms of action, in vitro activity, and mechanisms of resistance. Clin Infect Dis. 2015; 61: Suppl 2: S58-68. doi: 10.1093/cid/civ534.

Binda E., Marinelli F., Marcone G. L. Old and new glycopeptide antibiotics: action and resistance. Antibiotics (Basel). 2014; 3 (4): 572–594. doi: 10.3390/antibiotics3040572.

Brade K. D., Rybak J. M., Rybak M. J. Oritavancin: A new lipoglycopeptide antibiotic in the treatment of gram-positive infections. Infect Dis Ther. 2016; 5 (1): 1–15. doi: 10.1007/s40121-016-0103-4.

Scoble P. J., Reilly J., Tillotson G. S. Real-world use of oritavancin for the treatment of osteomyelitis. Drugs Real World Outcomes. 2020; 7: Suppl 1: 46–54. doi: 10.1007/s40801-020-00194-8.

Lampejo T. Dalbavancin and telavancin in the treatment of infective endocarditis: a literature review. Int J Antimicrob Agents. 2020; 56 (3): 106072. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2020.106072.

Reilly J., Jacobs M. A., Friedman B. et al. Clinical experience with telavancin for the treatment of patients with bacteremia and endocarditis: realworld results from the Telavancin Observational Use Registry (TOURTM). Drugs Real World Outcomes. 2020; 7 (3): 179–189. doi: 10.1007/s40801-020-00191-x.

CLSI. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing M100-Ed32. 2022.

Arhin F. F., Sarmiento I., Belley A. et al. Effect of polysorbate 80 on oritavancin binding to plastic surfaces: implications for susceptibility testing. Antimicrob Agents Chemother. 2008; 52 (5): 1597–1603. doi: 10.1128/AAC.01513-07.

Kavanagh A., Ramu S., Gong Y. et al. Effects of microplate type and broth additives on microdilution mic susceptibility assays. Antimicrob Agents Chemother. 2019; 63 (1). doi: 10.1128/AAC.01760-18.

Pfaller M. A., Sader H. S., Flamm R. K. et al. Oritavancin in vitro activity against gram-positive organisms from European and United States medical centers: results from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program for 2010-2014. Diagn Microbiol Infect Dis. 2018; 91 (2): 199–204. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2018.01.029.

Pfaller M. A., Flamm R. K., Castanheira M. et al. Dalbavancin in-vitro activity obtained against Gram-positive clinical isolates causing bone and joint infections in US and European hospitals (2011–2016). Int J Antimicrob Agents. 2018; 51 (4): 608–611. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2017.12.011.

Duncan L. R., Sader H. S., Huband M. D. et al. Antimicrobial activity of telavancin tested in vitro against a global collection of gram-positive pathogens, including multidrug-resistant isolates (2015–2017). Microb Drug Resist. 2020; 26 (8): 934–943. doi: 10.1089/mdr.2019.0104.

Saravolatz L. D., Pawlak J. VISA-Daptomycin non-susceptible Staphylococcus aureus frequently demonstrate non-susceptibility to Telavancin. Diagn Microbiol Infect Dis. 2019; 93 (2): 159–161. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2018.09.003.

Werth B. J., Jain R., Hahn A. et al. Emergence of dalbavancin non-susceptible, vancomycin-intermediate Staphylococcus aureus (VISA) after treatment of MRSA central line-associated bloodstream infection with a dalbavancin— and vancomycin-containing regimen. Clin Microbiol Infect. 2018; 24 (4): 429 e1-429 e5. doi: 10.1016/j.cmi.2017.07.028.

Steele J. M., Seabury R. W., Hale C. M., Mogle B. T. Unsuccessful treatment of methicillin-resistant Staphylococcus aureus endocarditis with dalbavancin. J Clin Pharm Ther. 2018; 43 (1): 101–103. doi: 10.1111/jcpt.12580.

Riccobono E., Giani T., Baldi G. et al. Update on activity of dalbavancin and comparators against clinical isolates of Gram-positive pathogens from Europe and Russia (2017–2018), and on clonal distribution of MRSA. Int J Antimicrob Agents. 2022; 59 (2): 106503. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2021.106503.

Kaushal R., Hassoun A. Successful treatment of methicillin-resistant Staphylococcus epidermidis prosthetic joint infection with telavancin. J Antimicrob Chemother. 2012; 67 (8): 2052-2053. doi: 10.1093/jac/dks165.

Bouza E., Valerio M., Soriano A. et al. Dalbavancin in the treatment of different gram-positive infections: a real-life experience. Int J Antimicrob Agents. 2018; 51 (4): 571–577. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2017.11.008.

Bender J. K., Cattoir V., Hegstad K. et al. Update on prevalence and mechanisms of resistance to linezolid, tigecycline and daptomycin in enterococci in Europe: Towards a common nomenclature. Drug Resist Updat. 2018; 40: 25–39. doi: 10.1016/j.drup.2018.10.002.

Li L., Higgs C., Turner A. M. et al. Daptomycin resistance occurs predominantly in vana-type vancomycin-resistant Enterococcus faecium in Australasia and Is associated with heterogeneous and novel mutations. Front Microbiol. 2021; 12: 749935. doi: 10.3389/fmicb.2021.749935.

Casapao A. M., Kullar R., Davis S. L. et al. Multicenter study of high-dose daptomycin for treatment of enterococcal infections. Antimicrob Agents Chemother. 2013; 57 (9): 4190–4196. doi: 10.1128/AAC.00526-13.

Johnson J. A., Feeney E. R., Kubiak D. W., Corey G. R. Prolonged use of oritavancin for vancomycin-resistant Enterococcus faecium prosthetic valve endocarditis. Open Forum Infect Dis. 2015; 2 (4): ofv156. doi: 10.1093/ofid/ofv156.

Belley A., Lalonde-Seguin D., Arhin F. F., Moeck G. Comparative pharmacodynamics of single-dose oritavancin and daily high-dose daptomycin regimens against vancomycin-resistant Enterococcus faecium isolates in an in vitro pharmacokinetic/pharmacodynamic model of infection. Antimicrob Agents Chemother. 2017; 61 (10): e01265-17. doi: 10.1128/AAC.01265-17.

Meyer K. A., Deraedt M. F., Harrington A. T. et al. Efficacy of oritavancin alone and in combination against vancomycin-susceptible and -resistant enterococci in an in-vivo Galleria mellonella survival model. Int J Antimicrob Agents. 2019; 54 (2): 197–201. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2019.04.010.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.