Динамика приобретённой резистентности к беталактамным антибиотикам основных грамотрицательных возбудителей инфекций в реконструктивной хирургии в 2004-2008 гг

Изучена резистентность 2134 клинических штаммов основных этиологически значимых видов грамотрицательных бактерий за пятилетний период наблюдения (2004-2008 гг.) к пяти беталактамным антибиотикам - цефепиму, пиперациллину/ тазобактаму, цефоперазону/сульбактаму, имипенему и цефалоспорину Ш поколения - цефтазидиму, который в данном исследовании служил препаратом сравнения. Всего проанализирована в динамике резистентность 554 штаммов E.coli, 578 штаммов P.aeruginosa, 255 штаммов Acinetobacter spp., 161 штамма Proteus mirabilis, 359 штаммов Klebsiella pneumoniae и 227 штаммов Enterobacter cloacae. Сравнительный анализ частоты выделения антибиотикоустойчивых штаммов у больных, находившихся на лечении в период 2004-2008 гг., в условиях частого и длительного использования цефоперазона/суль-бактама, меропенема и имипенема, показал, что наблюдается нарастание устойчивости ко всем беталактамным антибиотикам, в том числе и к ингибиторозащищённым. В значительно меньшей степени это относится к имипенему, однако выделение в 2008 году 39,5% штаммов P.aeruginosa, устойчивых к имипенему, подтверждает упомянутую тенденцию. Обращает на себя внимание «стремительный» рост резистентности в 2007 и 2008 гг. штаммов K.pneumoniae, E.cloacae и Acinetobacter spp. к обоим защищённым беталактамам в 3-5 раз, достигая соответственно в среднем 56 и 45%, 45 и 35% и 26 и 30% устойчивых штаммов. Это позволяет предположить, что основным механизмом резистентности этих микроорганизмов к защищённым беталактамам была гиперпродукция бета-лактамазы СТХ-М типа. В пользу этого свидетельствует высокая доля устойчивых к цефепиму штаммов: среди K.pneumoniae - 76,8% и среди Acinetobacter spp. - 62,2%. Делается вывод о необходимости периодической ревизии политики превентивной антибиотикопрофилактики, которая, являясь надёжной преградой развития послеоперационных осложнений у оперируемых больных, в то же время способствует селекции в госпитальных условиях нозокомиальных штаммов с иными механизмами антибиотикорезистентности.

нозокомиальные грамотрицательные возбудители, устойчивость, беталактамы

1. Pool K. Resistance to beta-lactam antibiotics. Cell Mol Life Sci 2004; 61: 2200-2223.

2. Bush K., Jacoby G., Medeiros A. A functional classification scheme for /З-lactamases and its correlation with molecular structure. Antimicrob Agents Chemother 1995; 39: 1211-1233.

3. NCCLS. 2000. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically. Approved standard M7-A5, 5th ed. NCCLS, Wayne, Pa.

4. Эйдельштейн М. В. Выявление /З-лактамаз расширенного спектра у грамотрицательных бактерий с помощью фенотипических методов. Современные методы клинической микробиологии. Выпуск 1. 2003; 104.

5. Скала Л. 3., Сидоренко С. В., Нехорошева А. Г. и др. Практические аспекты современной клинической микробиологии. Выпуск 1. 2003; 312.

6. National Committee for Clinical Laboratory Standarts 2001. M 100-S11(M2). Disk Diffusion Eleventh informational Suppl. NCCLS.

7. Решедько Г. Κ., Рябкова Е. Л., Фаращук А. H., Страчунский Л. С. Неферментирующие грамотрицательные возбудители нозокомиальных инфекций в ОРИТ России: проблемы антибиотикорезистентности. Клин микробиол антимикроб химиотер 2006; 8: 243-257.

8. Queenan A. M., Shang W., Bush K., Flamm R. Hydrolysis parameters for doripenem, meropenem, and imipenem tested with β-lactamases of molecular classes A to D. In: Program and Abstracts of the 18th European Congress of Clinical Microbiology and Infectious Diseases, April 19-22, 2008, Barcelona, Spain.

9. El Amin N., Giske C. G., Jalal S. et al. Carbapenem resistance mechanisms in P.aeruginosa alterations of porin OprD and efflux proteins do not fully explain resistance patterns observed in clinical isolates. APMIS 2005; 113: 187-196.

10. Эйдельштейн М. В., Страчунский Л. С., исследовательская группа РОСНЕТ. Динамика распространенности и чувствительности БЛРС-продуцирующих штаммов энтеробактерий к различным антимикробным препаратам в ОРИТ России. Клин микробиол антимикроб химиотер 2005; 7: 323-336.

11. National Committee for Laboratory Standards, Perfomance standards for antimicrobial susceptibility testing: 14th informational supplement NCCLS document M100-S14. 2004. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Wayne, PA.

12. Livermore D. M. Beta-Lactamases in laboratory and clinical resistance. Clin Microbiol Rev 1995; 8: 557-584.

13. Paterson D. L. Recommendation for treatment of severe infection caused by Enterobacteriaceae producing extended-spectrum beta-lactamases (ESBLs). Clin Microbiol Infect 2000; 6: 460-463.

14. Maglio D., Ong C., Banevicius M. A. et al. Determination of the in vivo pharmacodynamic profile of cefepime against extended-spectrum-beta-lactamase-product Escherichia coli at various inocula. Antimicrob Agents Chemother 2004; 48: 1941-1947.

15. Ромашов О. М., Яковлев С. В., Сидоренко С. В., Березин А. Г. Эффективность цефепима при лечении нозокомиальных инфекций, вызванных энтеробактериями - продуцентами бета-лактамаз расширенного спектра. Инфекц антимикроб тер 2003; 5.