Антибиотикочувствительность Neisseria meningitidis, выделенных от больных генерализованными формами менингококковой инфекции и от здоровых носителей
https://doi.org/10.37489/0235-2990-2022-67-5-6-19-24
Аннотация
В исследование включено 50 изолятов Neisseria meningitidis, выделенных от больных генерализованными формами менингококковой инфекции, и 48 изолятов, выделенных от носителей. Идентификацию выделенных изолятов проводили методом MALDI-TOF масс-спектрометрии с использованием масс-спектрометра Microflex LT (Bruker Daltonics, Германия). Минимальные подавляющие концентрации (МПК) бензилпенициллина, ампициллина, цефтриаксона, меропенема, ципрофлоксацина, азитромицина, рифампицина, хлорамфеникола оценивались методом серийных разведений в агаре с интерпретацией результатов, согласно критериям EUCAST 2021. Клиническая устойчивость к пенициллину выявлена у 7% изолятов. Однако у всех изолятов с МПК>0,064 мкг/мл (n=26) обнаружены мутации в гене penA. Снижение чувствительности к рифампицину обнаружено у четырёх изолятов, выделенных от больных и у четырёх — выделенных у носителей. У семи из восьми изолятов со сниженной чувствительностью к рифампицину обнаружены мутации в гене rpoB. Устойчивость к цефтриаксону, меропенему, ципрофлоксацину не выявлена.
Об авторах
Э. А. МАРТЕНСРоссия
Мартенс Эльвира Акрамовна — заведующий клинико-диагностической лабораторией, младший научный сотрудник, ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней ФМБА России»; ассистент кафедры медицинской микробиологии ФГБОУ ВО СЗГМУ им. И. И. Мечникова Минздрава России.
WOS Researcher ID: CAG-4447-2022
Scopus Author ID: 57206470215
Санкт-Петербург
Л. И. ЖЕЛЕЗОВА
Россия
Железова Людмила Ильинична — к. м. н., старший научный сотрудник отдела медицинской микробиологии и молекулярной эпидемиологии.
WOS Researcher ID: G-9662-2012
Scopus Author ID: 6505716185
Санкт-Петербург
В. В. ГОСТЕВ
Россия
Гостев Владимир Валерьевич — к. б. н., старший научный сотрудник — отдела медицинской микробиологии и молекулярной эпидемиологии ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней ФМБА России»; доцент кафедры медицинской микробиологии ФГБОУ ВО СЗГМУ им. И. И. Мечникова Минздрава.
WOS Researcher ID: P-1949-2016
WOS Researcher ID: 55614534400
197022, г. Санкт-Петербург, ул Профессора Попова, д. 9
Д. В. ЛИХОЛЕТОВА
Россия
Лихолетова Дарья Вадимовна — лаборант-исследователь отдела медицинской микробиологии и молекулярной эпидемиологии.
Санкт-Петербург
Д. П. ГЛАДИН
Россия
Гладин Дмитрий Павлович — к. м. н., доцент, и. о. заведующего кафедрой микробиологии, вирусологии и иммунологии.
Scopus Author ID: 6603374770
Санкт-Петербург
Список литературы
1. Collaborators GBDM. Global, regional, and national burden of meningitis, 1990–2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. The Lancet Neurology. 2018; 17: 1061–1082. doi:10.1016/S1474-4422(18)30387-9.
2. Edmond K., Clark A., Korczak V.S., Sanderson C., Griffiths U.K., Rudan I. Global and regional risk of disabling sequelae from bacterial meningitis: a systematic review and meta-analysis. The Lancet Infectious diseases. 2010; 10: 317–328. doi:10.1016/S1473-3099(10)70048-7.
3. McNamara L.A., MacNeil J.R., Cohn A.C., Stephens D.S. Mass chemoprophylaxis for control of outbreaks of meningococcal disease. The Lancet Infectious diseases. 2018; 18: e272–e81. doi:10.1016/S1473-3099(18)30124-5.
4. Nadel S. Treatment of Meningococcal Disease. J Adolescent Health. 2016; 59: S21–8. doi:10.1016/j.jadohealth.2016.04.013.
5. Girgis N., Sultan Y., Frenck R.W., Jr., El-Gendy A., Farid Z., Mateczun A. Azithromycin compared with rifampin for eradication of nasopharyngeal colonization by Neisseria meningitidis. Pediatr Infect Dis J. 1998; 17: 816–819. doi:00006454-199809000-00013.
6. Sidorenko S., Zakharenko S., Lobzin Y., Zhdanov K., Martens E., Gostev V. et al. Observational study of nasopharyngeal carriage of Neisseria meningitis in applicants to a military academy in the Russian Federation. Intern J Infect Dis. 2019; 81: 12–16. doi:10.1016/j.ijid.2018.12.012.
7. The European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters. Version 11.0, 2021. http://www.eucast.org.
8. Hong E., Deghmane A.E., Taha M.K. Acquisition of Beta-Lactamase by Neisseria meningitidis through Possible Horizontal Gene Transfer. Antimicrob Agents Chemother. 2018; 62 (9): e00831–18. doi:10.1128/AAC.00831-18.
9. Taha M-K., Vázquez J.A., Hong E., Bennett D.E., Bertrand S., Bukovski S. et al. Target gene sequencing to characterize the penicillin G susceptibility of Neisseria meningitidis. Antimicrobial Agents Chemother. 2007; 51: 2784–2792. doi:10.1128/AAC.00412-07.
10. Zapun A., Morlot C., Taha M.K. Resistance to beta-Lactams in Neisseria ssp. Due to Chromosomally Encoded Penicillin-Binding Proteins. Antibiotics (Basel). 2016; 5 (4): 35. doI:10.3390/antibiotics5040035.
11. Deghmane A.E., Hong E., Taha M.K. Emergence of meningococci with reduced susceptibility to third-generation cephalosporins. J Antimicrob Chemother. 2017; .72 (1): 95–98. doI:10.1093/jac/dkw400.
12. Młynarczyk-Bonikowska B., Majewska A., Malejczyk M., Młynarczyk G., Majewski S. Multiresistant Neisseria gonorrhoeae: a new threat in second decade of the XXI century. Med Microbiol Immunol. 2020; 209 (2): 95-108. doi:10.1007/s00430-019-00651-4.
13. Galimand M., Gerbaud G., Guibourdenche M., Riou J.Y., Courvalin P. High-level chloramphenicol resistance in Neisseria meningitidis. N Engl J Med. 1998; 339: 868–874. doi:10.1056/NEJM199809243391302.
14. Eliakim-Raz N., Lador A., Leibovici-Weissman Y., Elbaz M., Paul M., Leibovici L. Efficacy and safety of chloramphenicol: joining the revival of old antibiotics? Systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. J Antimicrob Chemother. 2015; 70: 979–996. doi:10.1093/jac/dku530.
15. Singhal S., Purnapatre K.P., Kalia V., Dube S., Nair D., Deb M. et al. Ciprofloxacin-resistant Neisseria meningitidis, Delhi, India. Emerg Infect Dis. 2007; 13: 1614–1616. doi:10.3201/eid1310.060820.
16. Skoczynska A., Alonso J.M., Taha M.K. Ciprofloxacin resistance in Neisseria meningitidis, France. Emerg Infect Dis. 2008; 14: 1322–1323. doi:10.3201/eid1408.080040.
17. Wu H.M., Harcourt B.H., Hatcher C.P., Wei S.C., Novak R.T., Wang X. et al. Emergence of ciprofloxacin-resistant Neisseria meningitidis in North America. N Engl J Med. 2009; 360: 886–892. doi:10.1056/NEJMoa0806414.
18. Tzanakaki G., Georgakopoulou T., Xirogianni A., Papandreou A., Deghmane A-E., Magaziotou I. et al. First report of meningococcal ciprofloxacin resistance in Greece due to invasive isolates of the sequence type ST-3129. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2020; 39: 2467–2470. doi:10.1007/s10096-020-03965-x.
19. Willerton L., Lucidarme J., Campbell H., Caugant D.A., Claus H., Jacobsson S. et al. Geographically widespread invasive meningococcal disease caused by a ciprofloxacin resistant non-groupable strain of the ST-175 clonal complex. J Infect. 2020; 81: 575–584. doi:10.1016/j.jinf.2020.08.030.
20. Potts C.C., Retchless A.C., McNamara L.A., Marasini D., Reese N., Swint S. et al. Acquisition of Ciprofloxacin Resistance Among an Expanding Clade of beta-Lactamase-Positive, Serogroup Y Neisseria meningitidis in the United States. Clin Infect Dis. 2021; 73: 1185–1193. doi:10.1093/cid/ciab358.
21. Taormina G., Campos J., Sweitzer J., Retchless A.C., Lunquest K., McNamara L.A. et al. Beta-lactamase-producing, ciprofloxacin-resistant Neisseria meningitidis isolated from a 5-month-old boy in the United States. J Pediatric Infect Dis Soc. 2021; 10: 379–381. dpi:10.1093/jpids/piaa085.
Рецензия
Для цитирования:
МАРТЕНС Э.А., ЖЕЛЕЗОВА Л.И., ГОСТЕВ В.В., ЛИХОЛЕТОВА Д.В., ГЛАДИН Д.П. Антибиотикочувствительность Neisseria meningitidis, выделенных от больных генерализованными формами менингококковой инфекции и от здоровых носителей. Антибиотики и Химиотерапия. 2022;67(5-6):19-24. https://doi.org/10.37489/0235-2990-2022-67-5-6-19-24
For citation:
MARTENS E.A., ZHELEZOVA L.I., GOSTEV V.V., LIKHOLETOVA D.V., GLADIN D.P. Antibiotic Sensitivity of Neisseria meningitidis Isolated From Patients with Generalized Forms of Meningococcal Infection and From Healthy Carriers. Antibiot Khimioter = Antibiotics and Chemotherapy. 2022;67(5-6):19-24. (In Russ.) https://doi.org/10.37489/0235-2990-2022-67-5-6-19-24