ФАКТОРЫ, ДЕЙСТВУЮЩИЕ НА СИНТЕЗ КЛЕТОЧНОЙ СТЕНКИ STAPHYLOCOCCUS AUREUS, И УСТОЙЧИВОСТЬ К АКТИНОМИЦИНУ D
Аннотация
Клетки штамма Staphylococcus aureus R80, устойчивого к актиномицину D, обладают клеточной стенкой, утолщённой за счёт дополнительного синтеза пептидогликана. Внесение в среду D-серина или D-треонина, модифицирующих предшественники пептидогликана значительно снижает устойчивость штамма R80 к актиномицину D. Субингибиторные концентрации антибиотика туникамицина - эффективного ингибитора синтеза стеночных тейхоевых кислот S.aureus, не влияющих на рост микроорганизма, также вызывают значительное увеличение чувствительности штамма R80 к актиномицину D. Изменения, вызываемые в композиции пептидогликана D-аминокислотами, а также ингибирование синтеза стеночных тейхоевых кислот повышает, по-видимому, проницаемость клеточной стенки у устойчивого штамма S.aureus R80 для актиномицина D.
Об авторах
В. Г. Булгакова
Московский государственный университет им. М. В. Ломоносова
Россия
Россия
Т. И. Орлова
Московский государственный университет им. М. В. Ломоносова
Россия
Россия
А. Н. Полин
Московский государственный университет им. М. В. Ломоносова
Россия
Россия
Список литературы
1. Reipert A., Ehlert K., Kast T., Bierbaum G. Morphological and genetic differences in two isogenic Staphylococcus aureus strains with decreased susceptibilities to vancomycin. Antimicrob Agents Chemother 2003; 47: 2: 568-576.
2. Cui L., Ma X., Sato K. et al. Cell wall thickening is a common feature of vancomycin resistance in Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol 2003; 41: 1: 5-14.
3. Cui L., Iwamoto A., Lian J-Q. et al. Novel mechanism of antibiotic resistance originating in vancomycin-intermediate Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 2006; 50: 2: 428-438.
4. McCallum N, Karauzum H., Getzmann R. et al. In vivo survival of teicoplanin-resistant Staphylococcus aureus and fitness cost of teicoplanin Resistance. Antimicrob Agents Chemother 2006; 50: 7: 2352-2360.
5. Yuan W, Hu Q, Cheng H. et al. Cell wall thickening is associated with adaptive resistance to amikacin in methicillin-resistant Staphylococcus aureus clinical isolates. J Antimicrob Chemother 2013; 68: 5: 1089-1096.
6. Орлова Т.И., Булгакова В.Г., Полин A.H. Изучение компонентов клеточной стенки Staphylococcus aureus, устойчивого к актиномицину D. Антибиотики и химиотер 2004; 49: 4: 11-15.
7. Орлова Т.И., Булгакова В.Г., Полин А.Н. Изучение компонентов клеточной стенки Staphylococcus aureus, устойчивого к грамицидину S. Антибиотики и химиотер 2003; 48: 1: 13-17
8. Полин A.H., Булгакова В.Г., Орлова Т.И., Грушина В.А. Устойчивость к актиномицину D грамицидинустойчивых штаммов стафилококка. Антибиотики и химиотер 1996; 41: 7-8; 13-17
9. Lambert P.A. Cellular impermeability and uptake of biocides and antibiotics in gram-positive bacteria and mycobacteria. J Appl microbial 2002; 92: Suppl: 46-54.
10. Reynolds P.E., Courvalin P. Vancomycin resistance to enterococci due to synthesis of precursors terminating in D-alanyl-D-serine. Antimicrob Agents Chemother 2005; 49: 1: 21-25.
11. Mainardi J.L., Villet R., Bugg T.D. et al. Evolution of peptidoglycan biosynthesis under the selective pressure of antibiotics in gram-positive bacteria. FEMS Microbiol Rev 2008; 32: 2; 386-408.
12. Binda E., Marinelli F., Marcone J.L. Old and new glycopeptide antibiotics: action and resistance. Antibiotics (Basel) 2014; 3: 4: 572-594.
13. Schleifer K.H., Hammes W., Kandler O. Effect of exogenous and endogenous factors on the primary structure of bacterial peptidoglycan. Adv Microbiol Physiol 1976; 13: 245-292.
14. Trippen B., Hammes W., Schleifer K.H., Kandler O. Mode of action of D-amino acids on the biosynthesis of peptidoglycan. Arch Microbiol 1976; 109: 3: 247-261.
15. De Jonge B.L.M.,Chang Y.-S.,Xu N., Gage D. Effect of exogenous glycine on peptidoglycan composition and resistance in a methicillin-resistant Staphylococcus aureus strain. Antimicrob Agents Chemother 1996; 40: 6: 1498-1503.
16. De Jonge B.L.M., Gage D., Xu N. The carboxyl terminus of peptidoglycan stem peptides is a determinant for methicillin resistance in Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 2002; 46: 10: 3151-3155.
17. Bertsche U., Weidenmaier C., Kuehner D. et al. Correlation of daptomycin resistance in a clinical Staphylococcus aureus strain with increased cell wall teichoic acid production and D-alanylation. Antimicrob Agents Chemother 2011; 55: 8: 3922-3928.
18. Bayer A.S., Schneider T., Sahl H.G. Mechanisms of daptomycin resistance in Staphylococcus aureus: role of the cell membrane and cell wall. Ann NY Acad Sci 2013; 1277: 139-158.
19. Swoboda J.G., Meredith T.C., Campbell J. et al. Discovery of a small molecule that blocks wall teichoic acid biosynthesis in Staphylococcus aureus. ACS Chem Biol 2009; 4: 10: 875-883.
20. Suzuki T., Swoboda J.G., Campbell J. et al. In vitro antimicrobial activity of wall teichoic acid biosynthesis inhibitors against Staphylococcus aureus isolates. Antimicrob Agents Chemother 2011; 55: 2: 767-774.
21. Campbell J., Singh A.K., Santa Maria J.P. et al. Synthetic lethal compound combinations reveal a fundamental connection between wall teichoic acid and peptidoglycan biosynthesis in Staphylococcus aureus. ACS Chem Biol 2011; 6: 1: 106-116.
22. Wang H., GillC.J., Lee S.H. et al. Discovery ofwall teichoic acid inhibitors as potential anti-MRSA /З-lactam combination agents. Chem Biol 2013; 20: 2: 272-284.
23. Булгакова В.Г., Орлова Т.И., Грушина В.А., Полин А.Н. Влияние экзогенного глицина на устойчивость к актиномицину D штамма Staphylococcus aureus, адаптированного к этому антибиотику. Антибиотики и химиотер 2008; 52: 11-12: 11-16.
24. Булгакова В.Г., Орлова Т.И., Грушина В.А., Полин А.Н. Изучение штамма Staphylococcus aureus, устойчивого к актиномицину D. Антибиотики и химиотер 2000; 45: 8: 6-11
25. de Lencastre H., de Jonge B.L., Matthews P.R., Tomasz A. Molecular aspects of methicillin resistance in Staphylococcus aureus. J Antimicrob Chemother 1994; 33: 1: 7-24.
26. Sewell E.W.C., Brown E.D. Taking aim at wall teichoic acid synthesis: new biology and new leads for antibiotics. J Antibiot 2014; 67: 43-51.
27. Farha M.A., Leung A., Sewell E.W. et al. Inhibition of WTA synthesis blocks the cooperative action PBPs and sensitizes MRSA to /3-lactams. ACS Chem Biol 2013; 8: 1: 226-233.
28. Орлова Т.П., Булгакова В.Г., Грушина В.А.,Полин А.Н. Компоненты клеточных стенок Staphylococcus aureus с двойной устойчивостью - к грамицидину S и актиномицину D. Антибиотики и химиотер 2007; 52: 3: 3-6.
29. Craney A., Romesberg F.E. A putative cro-like repressor contributes to arylomycin resistance in Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 2015; 59: 6: 3066-3074
Рецензия
Для цитирования:
Булгакова В.Г., Орлова Т.И., Полин А.Н. ФАКТОРЫ, ДЕЙСТВУЮЩИЕ НА СИНТЕЗ КЛЕТОЧНОЙ СТЕНКИ STAPHYLOCOCCUS AUREUS, И УСТОЙЧИВОСТЬ К АКТИНОМИЦИНУ D. Антибиотики и Химиотерапия. 2017;62(1-2):10-15.
For citation:
Bulgakova V.G., Orlova T.I., Polin A.N. THE FACTORS THAT AFFECT STAPHYLOCCUS AUREUS CELL WALL SYNTHESIS AND RESISTANCE TO ACTINOMYCIN D. Antibiotics and Chemotherapy. 2017;62(1-2):10-15. (In Russ.)
Просмотров: 312
Послать статью по эл. почте 