Preview

Антибиотики и Химиотерапия

Расширенный поиск

Исследование in vitro противоопухолевой и антимикробной активности препарата пэгилированных липосом с Сангвинарином

Полный текст:

Аннотация

Сангвинарин представляет собой растительный алкалоид, обладающий широким спектром биологической активности. Эффективность действия сангвинарина может быггь увеличена путём его интегрирования в липосомные наночастицы. Целью настоящего исследования являлось получение и очистка пэгилированного липосомного сангвинарина, изучение его свойств, а также противоопухолевой и антимикробной активности in vitro. Были получены пэгилированные липосомные наночастицы, содержащие сангвинарин. Размер липосом составлял 61,8+5,7 нм; эффективность включения сангвинарина в липосомы составляла 82,3+4,9%. Изучено высвобождение сангвинарина из липосомных частиц; продемонстрирован его пролонгированный характер. Исследование in vitro показало, что липосомный сангвинарин проявлял дозозависимую цитотоксическую активность в отношении опухолевый клеток линий MCF-7 (12,8 мкМ), L1210 (17,4 мкМ ), А431 (18,67 мкМ) и HepG2 (20,7 мкМ). Антимикробное действие липосомной формы препарата было установлено в отношении грамположительных (B.subtilis АТСС 6633 и B.coagulans 429) и грамотрицательных (E.coli ATCC 8739) бактерий, а также условно-патогеннык грибов Aspergillus ustus 6К. Полученные результаты свидетельствуют о перспективности дальнейшего исследования пэгилированного липосомного сангвинарина в качестве противоопухолевого и антимикробного агента.

Об авторах

С. В. Луценко
Первый московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова Минздрава России
Россия


Т. И. Громовых
Первый московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова Минздрава России
Россия


В. В. Каширин
Первый московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова Минздрава России
Россия


В. Н. Курьяков
Институт проблем нефти и газа РАН
Россия


А. А. Баранова
НИИ по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. Гаузе
Россия


В. С. Садыкова
НИИ по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. Гаузе
Россия


Н. Б. Фельдман
Первый московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова Минздрава России
Россия


Список литературы

1. Mitscher L.A, Park Y.H., Clark D., Clark G.W. 3rd, Hammesfahr P.D. et al. Antimicrobial agents from higher plants. An investigation of Hunnemannia fumaria efolia pseudoalcoholates of sanguinarine and chelerythrine. Lloydia 1978; 41 (2): 145-150.

2. Mahady G.B., Pendland S.L., Stoia A., Chadwick L.R. In vitro susceptibility of Helicobacter pylori to isoquinoline alkaloids from Sanguinaria canadensis and Hydrastis canadensis. Phytother Res 2003; 17 (3): 217-221.

3. Giuliana G., Pizzo G., Milici M.E., Musotto G.C., Giangreco R. In vitro antifungal properties of mouthrinses containing antimicrobial agents. J Periodontol 1997; 68 (8): 729-733.

4. Ahmad N., Gupta S., Husain M.M., Heiskanen K.M., Mukhtar H. Differential antiproliferative and apoptotic response of sanguinarine for cancer cells versus normal cells. Clin Cancer Res 2000; 6 (4): 1524-1528.

5. Schmeller T., Latz-Brüning B., Wink M. Biochemical activities of berberine, palmatine and sanguinarine mediating chemical defence against microorganisms and herbivores. Phytochemistry 1997; 44 (2): 257-266.

6. Lopus M., Panda D. The benzophenanthridine alkaloid sanguinarine perturbs microtubule assembly dynamics through tubulin binding. A possible mechanism for its antiproliferative activity. FEBS J 2006; 273 (10): 2139-2150.

7. Eun J.P., Koh G.Y. Suppression of angiogenesis by the plant alkaloid, sanguinarine. BiochemBiophys Res Commun 2004; 317 (2): 618-624.

8. Wang B.H., Lu Z.X., Polya G.M. Inhibition of eukaryote protein kinases by isoquinoline and oxazine alkaloids. Planta Med 1997; 63 (6): 494-498.

9. Lee S.S., Kai M., Lee M.K. Inhibitory effects of sanguinarine on monoamine oxidase activity in mouse brain. Phytother Res 2001; 15 (2): 167-169.

10. Jeng J.H., Wu H.L., Lin B.R., Lan W.H., Chang H.H. et al. Antiplatelet effect of sanguinarine is correlated to calcium mobilization, thromboxane and cAMP production. Atherosclerosis 2007; 191 (2): 250-258.

11. Adhami V.M., Aziz M.H., Mukhtar H., Ahmad N. Activation of prodeath Bcl-2 family proteins and mitochondrial apoptosis pathway by sanguinarine in immortalized human HaCaT keratinocytes. Clin Cancer Res 2003; 9 (8): 3176-3182.

12. Ding Z, Tang S.C., Weerasinghe P., Yang X., Pater A., Liepins A. The alkaloid sanguinarine is effective against multidrug resistance in human cervical cells via bimodal cell death. Biochem Pharmacol 2002; 63 (8): 1415-1421.

13. Weerasinghe P., Hallock S., Tang S.C., Trump B., Liepins A. Sanguinarine overcomes P-glycoprotein-mediated multidrug-resistance via induction of apoptosis and oncosis in CEM-VLB 1000 cells. Exp Toxicol Pathol 2006; 58 (1): 21-30.

14. Dalvi R.R. Sanguinarine: its potential as a liver toxic alkaloid present in the seeds of Argemonemexicana. Experientia 1985; 41 (1): 77-78.

15. Williams M.K., Dalvi S., Dalvi R.R. Influence of 3-methylcholanthrene pretreatment on sanguinarine toxicity in mice. Vet Hum Toxicol 2000; 42 (4): 196-198.

16. Kosina P., Walterova D., Ulrichova J., Lichnovsky V., Stiborova M. et al. Sanguinarine and chelerythrine: assessment of safety on pigs in ninety days feeding experiment. Food ChemToxicol 2004; 42 (1): 85-91.

17. Vrba J., Kosina P., Ulrichova J., Modriansky M. Involvement of cytochrome P450 1A in sanguinarine detoxication. Toxicol Lett 2004; 151 (2): 375-387.

18. Hu C.M., Cheng Y.W., Liao J.W., Cheng H.W., Kang J.J. Induction of contracture and extracellular Ca2+ influx in cardiac muscle by sanguinarine: a study on cardiotoxicity of sanguinarine. J Biomed Sci 2005; 12 (2): 399-407.

19. Singh R., Mackraj I., Naidoo R., Gathiram P. Sanguinarine downregulates AT1a gene expression in a hypertensive rat model. J Cardiovasc Pharmacol 2006; 48 (2): 14-21.

20. Brown J.M., Giaccia A.J. The unique physiology of solid tumors: opportunities (and problems) for cancer therapy. Cancer Res 1998; 58 (7): 1408-1416.

21. Gabizon A.A. Liposomal Drug Carriers in Cancer Therapy. In:Torchilin V.P. (ed.).Nanoparticulates as Drug Carriers. London: Imperial College Press 2006: 437-462.

22. Drabu S., Khanna S., Bajaj R., Khurana B. Clinical pharmacokinetic aspects of stealth liposomes: A review. Int J Drug Dev Res 2010; 2 (4): 871-878.

23. Elmowafy M., Viitala T., Ibrahim H.M., Abu-Elyazid S.K., Samy A. et al. Silymarin loaded liposomes for hepatic targeting: in vitro evaluation and HepG2 drug uptake. Eur J Pharm Sci 2013; 50 (2): 161-171.

24. Balabanov S.S., Gavrishchuk E.M., Rostokina E.Y., Plekhovich A.D., Kuryakov V.N. et al. Colloid chemical properties of binary sols as precursors for YAG optical ceramics. Ceramics International 2016; 42 (15): 17571-17580.

25. Zhang X., Lu S., Han J., Sun S., Wang L., Li Y. Preparation, characterization and in vivo distribution of solid lipid nanoparticles loaded with syringopicroside. Pharmazie 2011; 66: 404-407.

26. Mosmann T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods 1983; 65 (1-2): 55-63.

27. Balouiri M., Sadiki M., Ibnsouda S.K. Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: a review. J Pharm Anal 2016; 6 (2): 71-79.


Для цитирования:


Луценко С.В., Громовых Т.И., Каширин В.В., Курьяков В.Н., Баранова А.А., Садыкова В.С., Фельдман Н.Б. Исследование in vitro противоопухолевой и антимикробной активности препарата пэгилированных липосом с Сангвинарином. Антибиотики и Химиотерапия. 2018;63(3-4):3-7.

For citation:


Lutsenko S.V., Gromovykh T.I., Kashirin V.V., Kuryakov V.N., Baranova A.A., Sadykova V.S., Feldman N.B. In Vitro Study of Antitumor and Antimicrobial Activity of a Preparation of Pegylated Liposomes with Sanguinarine. Antibiotics and Chemotherapy. 2018;63(3-4):3-7. (In Russ.)

Просмотров: 38


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0235-2990 (Print)