Антимикробная активность веществ, продуцируемых штаммом Trichoderma citrinoviride ВКПМ F-1228: оптимизация лабораторного культивирования и спектр действия индивидуальных пептаиболов

Штамм Trichoderma citrinoviride ВКПМ F-1228 образует комплекс пептидных антибиотиков с антибактериальным и антимикотическим действием. Синтез пептаиболов тесно сопряжён со спорообразованием при выращивании штамма. Оптимальным способом культивирования для образования пептаиболов у штамма является стационарное выращивание в течении 14 сут при температуре 28°С и рН 7,5, с образованием плотной плёнки на модифицированной среде Сабуро, содержащей 30 г глюкозы и 12,5 г пептона на литр. Выделено восемь индивидуальных соединений - пептаиболов и оценен их спектр активности в отношении условно-патогенных бактерий и микромицетов, а также патогенных клинических аспергилл. Установлено, что вещества под номерами 9, 13, 14, 15 и 16 активны в отношении условно-патогенных грибов и бактерий, в том числе и метициллинорезистентного золотистого стафилококка, а соединения 9, 13 и 14 проявляли антимикотическую активность и в отношении клинических изолятов аспергилл.

пептаиболы, оптимизация культивирования, антибактериальная и антими-котическая активность, клинические аспергиллы

1. Khan A., Bacha N., Ahmad B., Lufullah G., Farooq U., Cox R.J. Fungi as chemical industries and genetic engineering for the production of biologically active secondary metabolites. Asian Pac J Trop Biomed 2014; 4: 11: 859-870.

2. Mendoza-Figueroa J., Soriano-Garcia M., Valle-Castillo L., Méndez-Lozano J. Peptides and Peptidomics: A Tool with Potential in Control of Plant Viral Diseases. Adv Microbiol 2014; 4: 539-548.

3. Ajesh K., Sreejith K. Peptide antibiotics: An alternative and effective antimicrobial strategy to circumvent fungal infections. Peptides 2009; 30: 999-1006.

4. Nagaray G., Uma V., Shivayogi M.S., Balaram H. Antimalarial activities of peptide antibiotics isolated from fungi. Antimicrob Agents Chemioter 2001; 45: 1: 145-149.

5. Daniel F.S., Filho E.R. Peptaibols of Trichoderma. Nat Prod Rep 2007; 24: 1128-1141.

6. Szekeres A., Leitgeb B., Kredics L., Antal Z., Hatvani L., Manczinger L., Vagvölgyi C. Peptaibols and related peptaibiotics of Trichoderma. A review. Acta Microbiol Immunol Hung 2005; 52: 2: 137-168.

7. Kubicek C.P., Komon-Zelazowska M., Sandor E., Druzhinina I. Facts and challenges in the understanding of the biosynthesis of peptaibols by Trichoderma. IS Chem Biodivers 2007; 4: 1068-1070.

8. Ren J., Xue C., Tian L., Xu M., Chen J., Deng M., Proksch P., Lin W. Asperelines A-F, peptaibols from the marine-derived fungus Trichoderma asperellum. J Nat Prod. 2009; 72: 1036-1044.

9. Stoppacher N., Neumann N.K.N., Burgstaller L. The comprehensive peptaibiotics database. Chem Biodiv 2013; 10: 5: 734-743.

10. Садыкова B.C., Кураков A.B., Куварина А.Е. Рогожин Е.А. Антимикробная активность штаммов грибов рода Trichoderma из Средней Сибири. Приклад биохим микробиол 2015; 51: 3: 1-9.

11. Садыкова B.C., Кураков A.B., Куварина А.Е., Тюрин А.П., Рогожин Е.А., Коршун B.A. Образование штаммом Trichoderma citrinoviride TYVI 4/11 антибиотиков пептаиболов. Проблем мед микол 2015; 17: 1: 41-46.

12. Druzhinina, Schmoll M., Seiboth B., Kubicek С.Р. Global carbon utilization profiles of wild type, mutant and transformant strains of Hypocrea jecorina. Appl Environ Microbiol 2006; 72: 2126-2133.

13. Tanzer M., Arst H.N., Skalchunes A.R., Coffin M., Darveaux B.A., Heiniger R.W., Shuster J.R. Global nutritional profiling for mutant and chemical mode-of-action analysis in filamentous fungi. Funct Integr Genomics 2003; 3: 160-170.

14. Осмоловский А.А., Баранова Н.А., Крейер B.T., Кураков A.B., Егоров Н.С. Твердофазное и поверхностное мембрано-жидкостное культивирование микромицетов, особенности их развития и образования ферментов. Приклад биохим микробиол 2014; 50: 3: 245-255.